送檢貓三聯抗體（中和試驗法）或狂犬抗體（ELISA法）檢測樣品時，是否曾因“樣品不合格”而困惑？這不僅延誤檢測進程，更可能影響對動物免疫狀態的準確評估。本文將從科學角度解析為何必須使用合格血清，幫助您規避常見問題。
核心原則：抗體檢測僅接受血清樣品
根據WOAH（原OIE）《陸生動物診斷試驗與疫苗手冊》和《中國獸藥典》檢測要求，無論是檢測貓三聯抗體的中和試驗，還是檢測狂犬抗體的ELISA法，檢測樣品均須使用合格的血清。使用全血或血漿作為樣品，會導致檢測無法進行或結果嚴重失真。
全血 vs 血漿 vs 血清，有何不同？
全血：直接從動物血管中采集、未經處理的血液稱為全血，包含血細胞和血漿；
血漿：如果全血中加入抗凝劑（如EDTA、檸檬酸鈉、肝素），后經離心去掉血細胞，得到的淡黃色液體稱為血漿。包含凝血因子、纖維蛋白原、抗凝劑等；
血清：如果讓全血自然凝固，后經離心去掉血凝塊，得到的上清液就是血清。
關鍵差異：血清不含纖維蛋白原和大部分凝血因子，也沒有額外添加的抗凝劑，這正是抗體檢測所必需的純凈環境。
（圖片來源于網絡）
為什么血漿和全血不可作為抗體檢測的樣品？
血漿中的抗凝劑對檢測的影響
中和試驗（貓三聯）：此實驗的核心在于樣品中的抗體能否“中和”活病毒。血漿中添加的抗凝劑，會干擾病毒與抗體的特異性結合，甚至直接影響病毒的活性或細胞的健康狀態，導致實驗結果嚴重偏差或無效。
ELISA（狂犬）：ELISA依賴于抗原-抗體的特異性結合反應。如試劑盒使用辣根過氧化物酶作為標記酶，肝素會有影響檢測結果；有研究表明，EDTA 抗凝的血液樣品總體OD值高于血清樣品，對 ELISA 檢測結果產生正向干擾；抗凝劑還可能非特異性地結合到反應板上，造成背景干擾。
血漿中纖維蛋白原對檢測的影響
血漿中富含纖維蛋白原。在ELISA檢測過程中，纖維蛋白原很容易聚集成細小的纖維蛋白凝塊。這些凝塊會：
堵塞加樣槍頭或加樣孔，導致加樣量不準。
包裹住抗體，阻止其與板子上的抗原結合，造成假陰性。
在孔內形成不均勻的沉淀，影響最終顯色的均一性和讀數的準確性。
全血對檢測的影響
1.嚴重溶血風險：全血在運輸、離心過程中，紅細胞極易破裂（溶血），釋放出血紅蛋白和細胞內物質。
中和試驗：溶血釋放的物質具有細胞毒性，能直接殺死實驗用的敏感細胞，實驗無法進行。
ELISA：血紅蛋白有顏色（紅色/棕色），會嚴重干擾光學讀數（尤其是ELISA常用的450nm波長），造成假陽性或假陰性。溶血釋放的細胞內酶也可能干擾ELISA的酶促反應。
2.含有大量干擾物：除了溶血產物，血細胞本身含有無數的酶、脂類等，都對實驗結果造成干擾。
（圖片來源于網絡）
為什么對血清量也有要求？
如中和試驗要求送檢測血清樣品量需達到0.8-1mL，主要原因有以下幾點：
1.實驗需求：無論是中和試驗還是ELISA，都需要消耗一定體積的血清來完成檢測流程，包括必要的重復孔或稀釋步驟（尤其是中和試驗需要做系列稀釋）。
2.質控與復檢需求：實驗室需要進行內部質控，遇到可疑或臨界結果時可能需要復測確認。樣品量不足，無法完成復檢。
3.操作損耗：移液過程中，不可避免會有少量血清粘附在管壁或槍頭上，需預留損耗量。
如何成功獲取一份合格血清？（避免溶血是核心）
溶血是導致血清樣品不合格的最常見原因，避免溶血要注意以下要點：
1.選擇合適的采血管：務必使用干燥、潔凈的血清分離管（通常為紅頭）。不可使用含抗凝劑的采血管（如紫頭/EDTA、藍頭/檸檬酸鈉、綠頭/肝素）。
2.規范采血操作：使用合適型號的針頭，確保穿刺順利。抽血時負壓適中，避免過度抽吸。采血后，不要劇烈搖晃，靜置時豎直傾斜放置，促進血液凝固。
3.確保血液完全凝固：無論是室溫條件下還是低溫條件下，均需靜置等待血液樣品充分凝固后，再進行離心操作，確保血液完全凝固。如果未完全凝固就離心，會形成纖維蛋白絲或凝塊。
4.離心是關鍵：通常設置轉速3000-4000rpm/min，離心5-10 分鐘，即可獲得較為純凈的血清。轉速太低或時間太短，血細胞分離不徹底，血清量少且易混入細胞。
5.小心移取血清：用移液器小心吸取上層的血清轉移到標記清晰的無菌管中。需避免觸碰到下層的血細胞層。
6.儲存與運輸：分離出的血清應盡快檢測。如需保存或運輸，請置于-20°C或更低溫度冷凍（避免反復凍融?。?。運輸時必須確保全程冷凍狀態。
總結：樣品不合格，對實驗結果的影響！
使用血漿：抗凝劑和纖維蛋白原干擾檢測，結果不可信。
使用全血：極易發生溶血或存在大量干擾物，檢測根本無法進行。
樣品嚴重溶血：檢測無法進行或結果無效。
血清量不足：可能無法完成檢測或復檢，導致無法出具報告。
血清未完全分離/污染：將直接影響檢測的準確性和可靠性。
一份合格的血清樣品，是獲得準確可靠的貓三聯、狂犬疫苗抗體檢測結果的基石！嚴格遵循“使用血清分離管、規范采血、確保血液完全凝固、充分離心、足量清亮血清、冷凍保存運輸”這六大要點，就能最大程度避免“樣品不合格”。
參考文獻：
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